数字PCR简介

数字PCR(DPCR)是在常规PCR和实时定量PCR(QPCR)之后开发的第三代PCR技术。它的核心原理是将含有靶核酸分子的反应混合物划分为成千上万个独立的微反应单元(例如微滴滴或微嵌段),每个单元内都会发生单个PCR扩增。


放大后,在每个单元上执行端点检测(通常是荧光信号的)。信号的存在或不存在确定该单元是否含有靶核酸分子。通过计算正单元的数量和应用泊松分布统计,可以直接计算原始样品中靶核酸的绝对拷贝数。

Digital PCR

数字PCR的核心优势在于其绝对量化的能力而无需依赖标准曲线,从而导致更精确和可靠的结果。此外,它对抑制剂具有较高的耐受性,并在检测出极低丰度的靶标(例如罕见的突变,痕量病原体和循环肿瘤DNA(CTDNA))方面表现出极好的灵敏度。

这些特征使DPCR能够显示出生命科学研究和临床诊断的巨大应用价值和潜力,包括肿瘤液体活检,非侵入性产前诊断,精确的病原体检测,基因表达分析,转基因成分的定量以及参考标准的评估。

数字PCR的类型

数字PCR可以根据用于将样本分为许多单个反应单元的分区方法将数字PCR广泛分为三种主要类型:

Types of Digital PCR

基于液滴的数字PCR

这种方法将PCR混合物分成数万个微小的油包水珠,每个油包水滴都充当一个独立的PCR微反应器。使用微流体产生液滴,然后进行PCR扩增。扩增后,单独分析液滴的荧光,以确定阳性或阴性分配。这种方法提供了非常多的分区,因其灵敏度和精度而被广泛使用。

基于芯片的数字PCR

在这种方法中,将PCR混合物划分为微流体芯片或板上的数万个微室或井。每个孔都包含一个作用的小体积,充当孤立的PCR反应。放大后,荧光成像或扫描会读取每个分区的信号。基于芯片的DPCR系统通常会在单个设备中整合样品分配,扩增和检测。

混合方法

这些技术包括基于液滴的反应单元和基于芯片的扫描方法,结合了液滴和芯片系统的特点。锐讯采用了这种方法。首先,使用微流体产生数万个液滴,然后将液滴分散在芯片上的单层中。PCR反应完成后,以与基于芯片的方法相同的方式通过成像收集荧光信号。

每种分区策略将核酸分子分离成单独的反应室,从而使泊松统计量通过计数阳性和负分区来准确量化靶DNA或RNA分子。分区方法的选择会影响分区数量、分区体积、工作流复杂性和仪器要求。

数字PCR中的泊松统计数据

泊松分布对数字PCR是基础的,因为它模拟了任何给定分区包含零,一个或多个靶标分子的概率。通过考虑这些概率,泊松统计能够准确估算每个分区的靶标分子的平均数量。具体而言,当已知每个分区的平均体积(VP)时,可以应用泊松模型来计算单位体积的靶核酸分子的绝对浓度。
Poisson statistics in digital PCR
Poisson statistics in digital PCR
Poisson statistics in digital PCR
Poisson statistics in digital PCR
Poisson statistics in digital PCR
Poisson statistics in digital PCR
泊松分布的关键见解是,负分区的比例(没有任何靶分子的分子)反映了分区中零分子的可能性,这允许计算所有分区中平均占用率(λ)。这种方法纠正了某些阳性分区包含多个分子的可能性,从而阻止了目标浓度的低估。
每个变量的准确测量(阳性分区,总分区和分区量)至关重要,因为任何误差都可以直接影响核酸浓度确定的精度。总体而言,泊松分布提供了统计框架,该框架将二进制阳性/负分区数据转换为数字PCR中目标分子的绝对且高度精确的量化。

如何在数字PCR中计算拷贝数/液滴和拷贝数/µL?

过将每个液滴的目标分子拷贝数乘以有效液滴的数量来计算样品所有有效液滴中目标分子的拷贝总数。根据每液滴目标分子的已知拷贝数(λ)和液滴体积,还可以计算每微升的拷贝数。

Formulas for calculate copies/droplet and copies/µL in digital PCR
Formulas for calculate copies/droplet and copies/µL in digital PCR
Formulas for calculate copies/droplet and copies/µL in digital PCR
Formulas for calculate copies/droplet and copies/µL in digital PCR
原始2 mL血液中的靶DNA浓度约为35,846份/ml。

数字PCR DRDX系列的工作流程是什么?

数字PCR工作流程很简单。它通常包括以下阶段:
workflow of digital PCR DropDX series

1.应混合物制备

数字PCR(dPCR)检测工作流程始于从样品中提取核酸以分离DNA或RNA。提取后,纯化的核酸与PCR主混合物混合,包括引物、荧光探针、核苷酸、酶和专为液滴形成而设计的特殊超混合物。

2.样品装载

3.液滴产生和PCR

4.芯片读取和数据分析

数字PCR RS32系列的工作流程是什么?

 the workflow of digital PCR RS32 series
一体化数字PCR系统RS32提供了一个全自动的“进样、出结果”工作流程。在简单的样品准备并将样品加载到芯片上后,用户只需要设置所需的参数即可。一旦将芯片放入RS32机器中,整个检测过程就会自动进行,而无需进一步的手动干预。这个简化的过程消除了分析过程中对动手步骤的需求,从而实现了从样本输入到结果输出的完全自动化。
 the workflow of digital PCR RS32 series
 the workflow of digital PCR RS32 series

数字PCR的优点和局限性

优点:

优势描述
绝对定量直接计算目标分子而无需标准曲线或参考,从而提高可靠性。
高精度和可重复性提供更精确和可再现的结果,尤其是对于低丰度目标和小倍数的变化。
优越的灵敏度检测极浓度的靶标,例如稀有突变,痕量病原体和ctDNA。
对抑制剂的高耐受性分区可以减少PCR抑制剂的影响,即使在具有挑战性的样本中也可以进行稳健的量化。
不依赖放大效率结果受PCR效率变化的影响较小,从而导致更准确的定量。

缺点:

劣势描述
较窄的动态范围有限数量的分区限制了可以准确量化的目标浓度的范围,通常需要对高度丰富的目标进行样品稀释。
成本更高DPCR的设备和消耗品通常比QPCR的设备昂贵。
较低的吞吐量DPCR通常每次运行更少的样本。
有限的试剂套件品种商业化试剂套件的品种仍然有限,甚至更少的套件获得了用于医院的资格。
非可互换试剂套件由于分区方法有所不同,因此来自不同数字PCR制造商的试剂套件不可互换。

数字PCR和QPCR的比较

QPCR 是具有广泛动态范围和快速结果的高通量实验的理想选择它是定量的,但通常需要标准曲线或参考,其准确性可能会受到抑制剂和PCR效率的影响。
DPCR提供了无标准的绝对定量 ,对低宽容或稀有靶标的灵敏度和精确度优异,并且对抑制剂的耐受性更大。 QPCR和DPCR之间的选择取决于实验的目标,样本类型和所需的灵敏度。

比较表:QPCR与DPCR

功能/方面实时荧光定量PCR(qpcr)数字PCR(DPCR)
定量相对或绝对(需要标准曲线或参考)绝对(无需标准或参考)
反应格式散装PCR,柔性反应体积样品分区,固定分区卷
PCR效率影响受PCR效率变化的影响(指数阶段收集的数据)不受扩增效率的影响
对抑制剂的耐受性容易发生抑制剂较高的抑制剂耐受性
检测方法实时检测终点检测
动态范围广泛的动态范围较窄的动态范围
灵敏度较高的变化,对稀有靶标敏感不太敏感检测小小的变化和罕见目标,更高的灵敏度
可重复性温和,可能受到各种因素的影响更高的可重复性
统计能力降低更高
协议成熟度良好的协议从qPCR轻松过渡,但协议仍在开发
吞吐量高的降低

数字PCR(DPCR)和下一代测序(NGS)之间的比较

数字PCR(DPCR)和下一代测序(NGS)是分子生物学和临床诊断的补充技术。他们没有竞争,而是通常一起使用来最大化分析能力:

NGS 是广泛发现的理想选择,可以识别出广泛的遗传变异和生物标志物,而没有事先了解突变。对于全面的而言,它是基础的 DPCR ,提供了特定目标的超敏感验证和精确量化,使其适合跟踪已知突变或稀有变体,尤其是在监测治疗反应方面。

NGS数字PCR数字PCR
检测极限WGS和WES的10%-5%0.1%-0.001%
数据分析广泛的生物信息学支持,要求数据解释直截了当
突变知识要求不需要突变的先验知识必需的
检测范围数百至全基因组或整个基因组有限的
定量半定量绝对定量
检测到的更改类型整个基因组/面板上的拷贝数改变,结构重排,SNV或甲基化变化在单个基因/区域可能
周转时间(tat)长的短的
成本高的低的

这些技术通常集成到工作流程中:用于发现和分析的NG,然后是DPCR,用于对所选目标的敏感,定量监测。这种协同作用在精密医学,肿瘤学,传染病监测和基因检测中特别有价值。

数字PCR的应用

Applications of Digital PCR
Applications of Digital PCR

引用

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